快乐十分

收藏本站

营养限制条件下ATGL维持草鱼脂肪细胞脂质代谢稳态的转录调控机制研究

 
【摘要】:食物匮乏是动物在自然环境中生存面临最大的威胁。脊椎动物为了维持生命以及保障繁殖而进化出脂肪组织,从而将能量以甘油三酯的形式储存于脂滴中。当机体受到营养限制胁迫时,脂肪细胞内甘油三酯被脂肪酶分解为甘油和游离脂肪酸。其中,释放的游离脂肪酸伴随血液循环进入其他组织,通过氧化分解以提供能量来维持生理活动。与哺乳动物相比,鱼类耐饥饿的时间更长。目前,关于营养限制状况下,调控鱼类脂肪细胞启动脂解的分子机制研究还未见报道,而此类研究的缺失,直接限制了养殖鱼类脂质蓄积人工调控技术的发展。基于此,本论文提出以下两个科学问题:1.鱼类脂肪细胞如何响应营养限制而启动脂解过程?2.鱼类脂肪细胞如何在营养限制状况下避免脂解产生的游离脂肪酸毒性作用而维持自身稳态?围绕这两个科学问题,本研究以草鱼为研究对象,运用分子克隆、蛋白纯化、实时荧光定量PCR、免疫荧光、蛋白印迹、脂肪细胞原代培养等技术,对营养限制状况下鱼类脂肪细胞脂解过程的调控网络开展了系统研究,以期为鱼类脂质代谢理论的建立提供一定的基础资料。本文得出以下研究结果和结论:1.ATGL是连接草鱼脂肪细胞脂解与环境营养变化的关键点克隆草鱼中性脂酶ATGL、HSLa、HSLb和MGL完整CDS序列,测序鉴定其分别编码499、697、872和300个氨基酸。生物信息学分析发现,硬骨鱼类的ATGL和MGL的基因结构和功能域在物种间高度保守;而硬骨鱼类的HSLa和HSLb基因由于基因组加倍事件而产生分化。组织表达谱分析表明,草鱼ATGL、HSL和MGL均在氧化组织(肝脏、肌肉)及腹腔脂肪中高表达。营养限制条件下,草鱼脂肪细胞的ATGL表达变化显著,以启动脂解过程。而HSL和MGL的表达及HSL磷酸化水平未发生变化。因此,ATGL的转录调控可能是草鱼脂肪细胞响应营养限制启动脂解的重要机制。2.ATGL促进脂肪细胞脂滴的分解,其介导的脂解与PPARγ介导的脂肪酸重新酯化耦联免疫荧光发现ATGL大部分定位在草鱼脂肪细胞的脂滴表面,表明其是脂滴蛋白。通过原核表达系统获得草鱼ATGL纯化重组蛋白。处理脂肪细胞后,脂肪细胞内大脂滴分解为小脂滴,胞内TG含量显著下降(p0.05),同时培养基中游离脂肪酸和甘油的含量显著上升(p0.05),表明ATGL可催化TG的水解。荧光定量结果显示ATGL对脂肪酸从头合成基因的表达无影响(p0.05),而脂肪酸β氧化基因CPT1b表达升高(p0.05),表明ATGL调控脂解产生的游离脂肪酸可进入线粒体作为能量底物。PPARα和PPARγ的激活(p0.05)则表明ATGL调控脂解产生的游离脂肪酸还可以发挥分子信号的作用。用抑制剂GW9662抑制ATGL促脂解过程中PPARγ表达后,会导致胞内TG含量继续显著下降(p0.05),同时培养基中游离脂肪酸和甘油的含量显著上升(p0.05);基因表达结果显示脂肪酸重新酯化相关基因DGAT1b及GyK恢复到基础水平,而内质网应激标志基因Bip及Chop表达显著上升(p0.05),表明ATGL催化的脂解与PPARγ介导的脂肪酸重新酯化耦联,防止脂解过程中脂肪细胞内质网应激的发生和TG的过度丢失。因此,脂解与游离脂肪酸的重新酯化耦联可能是对脂肪细胞的一种保护机制。3.营养限制下ATGL的转录表达由cAMP/PKA/CREB调控双荧光素酶报告实验表明,草鱼ATGL基因最小启动子活性区域位于-299bp到-261bp之间。定点突变和过表达实验表明该区域内PPARαa和CREB位点是影响草鱼ATGL基因启动子活性的顺式作用元件。ATGL的表达随Forskolin剂量的升高而逐渐增加(p0.05),同时抑制CREB可以逆转Forskolin的促脂解作用;相反,抑制PPARα则无此逆转作用。这些结果表明草鱼ATGL的转录调控存在两种模式:脂肪细胞基础脂解状态下PPARαa调控其转录;脂肪细胞刺激脂解状态下经典的信号通路cAMP/PKA/CREB调控其转录。随饥饿时间的延长,胞内cAMP的含量及PKA酶活及CREB磷酸化显著上升(p0.05),表明营养限制激活cAMP/PKA/CREB信号通路。进一步发现,抑制CREB可以阻断脂肪细胞饥饿过程中ATGL在16h和32h时间点的表达(p0.05),且TG含量在处理组显著高于对照组(p0.05)。因此,草鱼在营养限制状况下,其脂肪细胞ATGL的转录表达由cAMP/PKA/CREB调控。4.cAMP/PKA/CREB/ATGL-PPARγ抑制脂肪细胞营养限制过程中内质网应激的发生及TG的过度丢失抑制CREB可以阻断脂肪细胞饥饿过程中PPARγ及DGAT1、GyK的表达(p0.05),表明cAMP/PKA/CREB/ATGL调控营养限制下PPARγ介导的脂肪酸重新酯化。饥饿处理组培养基中游离脂肪酸含量增加,然而在8h饥饿组未检测到游离脂肪酸,表明草鱼脂肪细胞通过cAMP/PKA/CREB/ATGL调控脂解产生的游离脂肪酸先进入线粒体氧化满足自身的能量需求。随饥饿时间的延长,在24h以后,培养基中FFA含量显著下降(p0.05)、甘油含量不在变化(p0.05);GW9662处理组在饥饿32h时间点胞内TG含量显著低于对照组(p0.05),同时培养基中游离脂肪酸和甘油的含量显著上升(p0.05),而GyK的表达和酶活均受到抑制(p0.05),因此草鱼脂肪细胞在“无私”的表现后又会通过PPARγ/Gyk的作用合成TG,从而保证了细胞内TG不会过度流失。GW9662处理组在饥饿16h、32h时间点内质网应激标志基因表达显著上升(p0.05),表明PPARγ/DGAT1的表达上升是为了防止脂解过程中脂肪细胞内质网应激的发生,从而保护脂肪细胞免受过高浓度游离脂肪酸的毒性危害。在体结果发现脂肪细胞直径在1周、2周与4周之间无差异(p0.05),结果显示cAMP/PKA/CREB/ATGL-PPARγ信号通路激活。因此,认为草鱼脂肪细胞在饥饿过程中这种“自私-无私-自私”的特性可能是其保证机体在长期营养限制过程中能量稳态的潜在机制。研究表明,(1)营养限制状况下,草鱼脂肪细胞通过cAMP/PKA/CREB信号通路调控ATGL的转录表达启动脂解;(2)在草鱼响应营养限制过程中,作为脂肪细胞在饥饿过程对自身造成伤害的一种保护机制,cAMP/PKA/CREB/ATGL调控PPARγ介导的脂肪酸重新酯化,以防止脂解过程中脂肪细胞内质网应激的发生和TG的过度丢失,延长其为其他组织提供能量底物的时间,从而帮助机体承受长时间的饥饿。因此,本研究认为,cAMP/PKA/CREB/ATGL启动的脂解与PPARγ介导的脂肪酸重新酯化耦联是草鱼脂肪细胞适应长期饥饿维持自身能量稳态的一种适应性策略。
【学位授予单位】:西北农林科技大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2019
【分类号】:S917.4

(如何获取全文? 欢迎:、、)

支持CAJ、PDF文件格式


【相似文献】
中国期刊全文数据库 前10条
1 吴志强;徐威;;[J];中学生物教学;2014年05期
2 吴高华;[J];生物学教学;2004年12期
3 风影凌飞;;[J];科学启蒙;2018年07期
4 方明;;[J];人人健康;2017年18期
5 马莉;[J];中国美容医学;2004年01期
6 郭志儒;[J];中国兽医学报;2002年02期
7 朱晓海;[J];实用美容整形外科;1994年02期
8 村上齐;张欣平;;[J];饲料与畜牧;1989年04期
9 ;[J];祝您健康;2009年09期
10 潘周娴;朱惠娟;潘慧;龚凤英;;[J];医学综述;2017年03期
中国重要会议论文全文数据库 前10条
1 温宇;杨姗姗;胡秀芬;卢慧玲;刘婧;;[A];中华医学会第十五次全国儿科学术大会论文汇编(上册)[C];2010年
2 何玉秀;陈龙浩;张海峰;信延宁;;[A];中国解剖学会2012年年会论文文摘汇编[C];2012年
3 罗肖;贾如;魏双羽;Jonathan P.Whitehead;闫剑群;;[A];中国生理学会张锡钧基金第十三届全国青年优秀生理学学术论文综合摘要、中国生理学会第十一届全国青年生理学工作者学术会议论文摘要[C];2015年
4 李影;;[A];中国遗传学会第八次代表大会暨学术讨论会论文摘要汇编(2004-2008)[C];2008年
5 李翅翅;李力群;张丹;;[A];2015年浙江省整形与美容暨修复重建学术年会论文汇编[C];2015年
6 逯伟达;Hengwei Zhang;Yingchun Zhao;Rui Cao;Peijing Rong;Weikuan Gu;Jing Xiao;Dengshun Miao;Joan Lappe;Robert Recker;高海青;Gary Guishan Xiao;;[A];中华医学会第三次骨质疏松和骨矿盐疾病中青年学术会议论文汇编[C];2011年
7 丁晓颖;彭永德;董维平;王煜非;潘晓洁;刘尚全;杨颖;;[A];2006年中华医学会糖尿病分会第十次全国糖尿病学术会议论文集[C];2006年
8 李晓华;郑升;刘优萍;李华峰;骆天红;李杲;罗敏;;[A];2006年中华医学会糖尿病分会第十次全国糖尿病学术会议论文集[C];2006年
9 汤其群;;[A];第七届全国医学生物化学与分子生物学和第四届全国临床应用生物化学与分子生物学联合学术研讨会暨医学生化分会会员代表大会论文集[C];2011年
10 彭永德;丁晓颖;董维平;王育瑶;王煜非;程群;江博仁;杨颖;;[A];2008内分泌代谢性疾病系列研讨会暨中青年英文论坛论文汇编[C];2008年
中国重要报纸全文数据库 前10条
1 健康时报记者 白轶南;[N];健康时报;2016年
2 记者 刘霞;[N];科技日报;2017年
3 英国广播公司 吴汉兴 译;[N];北京科技报;2009年
4 记者 卢苏燕;[N];新华每日电讯;2002年
5 兰政文;[N];中国医药报;2003年
6 ;[N];中国医药报;2003年
7 刘国信;[N];中国中医药报;2005年
8 李学梅;[N];新华每日电讯;2008年
9 夏;[N];健康报;2007年
10 惠 丛;[N];中国质量报;2004年
中国博士学位论文全文数据库 前10条
1 赵璨;机械敏感离子通道Piezo1与小鼠胰岛素抵抗的相关性及可能的炎症机制[D];南京医科大学;2019年
2 孙健;营养限制条件下ATGL维持草鱼脂肪细胞脂质代谢稳态的转录调控机制研究[D];西北农林科技大学;2019年
3 云巾宴;延黄牛脂肪细胞转录组学及相关功能基因对成脂分化作用的研究[D];延边大学;2018年
4 卢建雄;营养和激素对原代培养大鼠脂肪细胞脂肪形成的调控及机理研究[D];西北农林科技大学;2005年
5 刘毅;小檗碱对3T3-L1脂肪细胞增殖、分化、凋亡及脂肪因子的影响[D];复旦大学;2007年
6 谢湘竹;HDL和apoA-I模拟肽对脂肪细胞分泌功能的影响及其机制探讨[D];中南大学;2007年
7 阳军;烟酸对脂肪细胞功能和动脉粥样硬化的影响及其机制[D];中南大学;2007年
8 钟巧青;高密度脂蛋白对炎性脂肪细胞功能的影响[D];中南大学;2007年
9 董劭壮;炎症对脂肪细胞功能的影响及其机制探讨[D];中南大学;2007年
10 杜宝文;新基因筛选及其在脂肪细胞中的功能研究[D];西北农林科技大学;2013年
中国硕士学位论文全文数据库 前10条
1 肖玫;磷脂酰肌醇PI(4,5)P_2调控3T3-L1脂肪细胞GLUT4转运的研究[D];浙江工业大学;2018年
2 孙伟芳;呼伦贝尔羊两个品系不同部位脂肪细胞形态及脂肪代谢相关基因表达差异分析[D];四川农业大学;2017年
3 李程;DHA/EPA构成比调节3T3-L1脂肪细胞功能研究[D];南方医科大学;2018年
4 吴悠;辛伐他汀抑制血管紧张素Ⅱ诱导的3T3-L1脂肪细胞中NOX4过表达引起的氧自由基生成和脂肪因子分泌的机制研究[D];大连医科大学;2018年
5 钱慧琳;GHR低表达对FFA诱导脂肪细胞炎症因子表达和分泌的影响及其作用机制[D];南华大学;2018年
6 刘龙洲;C-型利钠肽通过NPRB/NPRC-cGMP依赖通路调控鸡脂肪细胞的脂肪沉积和分解[D];长江大学;2018年
7 吕舜;miR-129-5p对脂肪细胞增殖、分化及棕色化的作用及机制研究[D];西北农林科技大学;2017年
8 张世奇;PLIN1对奶牛脂肪细胞脂代谢及炎性细胞因子合成的影响[D];吉林大学;2017年
9 王翠喆;TLR9/KLF4对脂肪细胞NF-κB炎症信号的抑制作用及机制研究[D];石河子大学;2017年
10 王建琳;山羊抗猪脂肪细胞膜抗体的制备及特异性研究[D];山西农业大学;2003年
中国知网广告投放
 快捷付款方式  订购知网充值卡  订购热线  帮助中心
  • 400-819-9993
  • 010-62791813
  • 010-62985026